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EnglishCoordinador:
Dra. Ana Y. Harada • Museu Paraense Emílio Goeldi (e-mail: ahara@museu-goeldi.br)
Investigadores responsables:
Este del Pará - Dra. Ana Y. Harada (MPEG)
Maranhão - Dr. Francisco Limeira de Oliveira (UEMA)
Grupos de interés y diversidad de especies estimada:
Arañas del grupo Dionycha que ocurren en el suelo (Corinnidae, Liocranidae, Gnaphosidae, Prodidomidae, Clubionidae, Oonopidae, Salticidae, Sparassidae, Zoridae): 80 a 120 especies en la Amazonía.
Hormigas (Familia Formicidae) presentes en la hojarascay el suelo (Agroecomyrmecinae, Cerapachyinae, Dolichoderinae, Ectatomminae, Formicinae, Myrmicinae, Ponerinae, Proceratiinae): 100 a 350 especies en la Amazonía.
Papel biológico:
Estudios sobre el flujo de energía y el movimiento de materiales en los niveles tróficos de la cadena alimentaria indican que las arañas son uno de los mayores componentes de la fauna de predadores, siendo responsables por la captura de un gran contingente poblacional de insectos (WISE, 1993).Varios inventarios de arañas han sido ya realizados con protocolos padronizados de recolección, lo cual permitió que se obtuviesen medidas de esfuerzo de muestreo, análisis estadísticas y pruebas de métodos para la estimativa de riqueza en especies (BARREIROS, 2004; RICETTI, 2005).
Las hormigas de la hojarasca y del suelo son responsables por una parte significativa del reciclaje de nutrientes y de la aeración de los estratos superficiales del suelo, afectando a la abundancia y la distribución de diversos organismos animales y vegetales, mediante competición, predación, actuando también en la aeración y fertilización de los suelos y como ingenieros del ecosistema. Ejercen un impacto importante también en la predación, la dispersión de semillas y sobre la estructura de las comunidades de invertebrados.
Técnica de Recolección. Extractores de Winckler
Se definen áreas de un metro cuadrado, con la ayuda de cuatro reglas de madera de un metro de extensión cada una. Se tamizan la hojarasca y el extracto superficial del suelo de cada área con un concentrador (Figura 1). Se segregan con extractores de Winkler, durante tres días, el material en partículas resultante y los organismos presentes (Figura 2).La eficiencia de este método se observa en el muestreo de diversos grupos de invertebrados (FISHER, 1999).
Unidad de muestreo: Cada muestra está constituida por el conjunto de animales que resultan de la exposición a extractores de Winckler, durante tres días, de un metro cuadrado de hojarasca tamizada.
Diseño de muestreo: En cada parcela se obtendrán tres metros cuadrados de hojarasca tamizada. Los puntos de muestreo se distribuirán dentro de la parcela del Protocolo 15, determinada para el estudio de árboles con DAP>10cm, localizada al lado derecho de la senda (entre 5 y 6 m de distancia del final de la senda). Los puntos de salida de las sendas de las parcelas para los tres puntos de muestreo se localizarán a 10, a 110 y a 210 m del inicio de la senda de la parcela, midiéndose estas distancias siguiendo la senda de la parcela. Se hará un muestreo de todo el lote (dividido en 30 parcelas), totalizando 90 muestras por expedición. Dentro de cada lote se obtendrán las muestras en 6 bloques de cinco sub-parcelas, de forma que se obtengan 15 muestras cada tres días. Las muestras se harán siempre por la mañana (de las 6 a las 11h).Se harán muestreos de los bloques alternadamente, y cada uno corresponderá a una columna en el lote, como en la Figura 3.
Figura 3. Disposición de los bloques dentro de las sub-parcelas.
Variables ambientales: Se medirá la profundidad de la hojarasca en dos puntos dentro de un área de un metro cuadrado muestreado con la ayuda de una vara graduada en centímetros. Se medirá el volumen en campo comprimiendo en un balde graduado en mililitros toda la hojarasca presente en el área de un metro cuadrado adyacente y, ya en laboratorio, la hojarasca tamizada se medirá en un becker graduado en milímetros, antes de pasarla por los extractores de Winkler. Se podrán utilizar otras variables, como humedad del aire, temperatura del aire, precipitación pluviométrica y clasificación del suelo, siempre que se encuentren disponibles para cada parcela.
Fijación y conservación del material: El material biológico se fijará y se conservará en alcohol al 75-80%.Los ejemplares recolectados se depositarán en las colecciones del INPA, del MPEG y de otras colecciones depositarias fieles de la Amazonía.
Restricciones a actividades que perjudiquen el desarrollo del protocolo: Para optimizar la correlación de los datos con las variables bióticas y abióticas, los puntos de recolección se deben establecer dentro de las transecciones definidas para los estudios botánicos, lo cual puede suscitar objeciones. En el caso de que no sea posible hacer las recolecciones dentro de las referidas transecciones, se deben hacer dentro de cada parcela, en las transecciones adyacentes.
Referências:
BARREIROS, J.A.P. Inventário da araneofauna (Arachnida, Araneae) de serapilheira na Estação Científica Ferreira Penna, Pará, Brasil. 2004. Dissertação (Mestrado) – Programa de Pós-Graduação em Zoologia, MPEG/UFPA, Belém, 2004.
BESTELMEYER, B. T.; AGOSTI, D.; ALONSO, L. E.; BRANDÃO, C. R. F.; BROWN, W. L. Jr.; DELABIE, J. H. C.; SILVESTRE, R. Field techniques for the study of ground-dwelling ants: An overview, description and evaluation. In: AGOSTI, D.; MAJER, J. D.; ALONSO, L. E.; SCHULTZ, T. R. (Orgs.). Ants: Standard methods for measuring and monitoring biodiversity. Washington: Smithsonian Institution Press, 2000. p. 122-144.
FISHER, B. L. Improving inventory efficiency: a case study of leaf-litter ant diversity in Madagascar. Ecological Applications, v. 9, n. 2, p. 714-731, 1999.
RICETTI, J. Inventário de aranhas (Arachnida, Araneae) em quatro fitofisionomias da Serra do Cachimbo, Novo Progresso, Pará, Brasil. Dissertação (Mestrado) – Programa de Pós-Graduação em Zoologia, MPEG/UFPA, Belém, 2005.
WISE, D.H. Spiders in ecological webs. Cambridge: Cambridge University Press, 1993. p. 328.
